在PCR實驗中,為了避免引物與已知序列的交叉反應,從而確保實驗的特異性,以下是一些關鍵的引物設計原則和策略:1.**選擇高保守性區域**:引物比較好設計在模板cDNA的保守區內,這樣可以確保引物與目標序列的特異性結合。通過比較不同物種的同一基因序列,可以確定基因的保守區。2.**避免引物與非目標序列的同源性**:設計引物時,應避免與基因組中的重復序列、假基因或高同源性區域設計引物??梢酝ㄟ^BLAST等工具對引物進行同源性分析,確保引物只與目標序列結合。3.**引物長度和GC含量**:引物長度一般在15-30堿基之間,常用的是18-27bp。GC含量一般為40%-60%,以45-55%為宜。過高或過低的GC含量都不利于引發反應,上下游引物的GC含量和Tm值應保持接近。4.**避免引物的3'端錯配**:引物3'端的堿基應嚴格要求配對,特別是倒數第二個堿基,以避免因末端堿基不配對而導致PCR失敗。引物3'端比較好不要選擇A,比較好選擇T,因為當末位鏈為T時,錯配的引發效率降低。5.**避免引物自身及引物之間的互補序列**:引物自身不應存在互補序列,否則引物自身會折疊成發夾結構,影響引物與模板的復性結合。前后引物之間也不應具有互補性,尤其應避免3'端的互補重疊以防止引物二聚體的形成。Endo H 的活性受 pH 值的強烈影響,通常在酸性條件下表現出好的活性,一般合適 pH 范圍在 5.0-6.0 左右。Recombinant Human EphB3 Protein,His Tag
CUT&RUN和ChIC是兩種用于研究蛋白質-DNA相互作用的技術,它們有一些關鍵的區別:1.**技術原理**:-**ChIC(ChromatinImmunocleavage)**:ChIC技術利用抗體將感興趣的蛋白與ProteinA-MNase相結合來進行DNA切割。ChIC的優勢在于使用TF特異性抗體系住MNase,并只在結合位點裂解。-**CUT&RUN(CleavageUnderTargetsandReleaseUsingNuclease)**:CUT&RUN技術則是在核的輕微MNase處理后釋放單核小體和TF-DNA復合物,留下寡核小體。CUT&RUN通過在冰上進行簡短的消化反應,在TF結合的MNase擴散到周邊的基因組和裂解可接近的染色質之前在上清中恢復TF-DNA復合物。2.**操作步驟和簡便性**:-**ChIC**:ChIC可能需要甲醛固定操作,這可能重新引入了ChIP-seq的一些問題,如交聯導致的DNA和蛋白質的化學修飾。-**CUT&RUN**:CUT&RUN簡化了操作步驟,使用磁珠固定細胞核,適用于新鮮和冷凍組織樣本,縮短了生成DNA測序文庫的時間(1-2天)。3.**背景信號和信噪比**:-**ChIC**:ChIC產生的背景信號可能較高,因為它可能涉及到非特異性的DNA切割。
蛋白A-微球菌核酸酶(pA-MNase)是一種特殊的融合蛋白,它結合了蛋白A和微球菌核酸酶(MNase,MicrococcalNuclease)的特性。以下是pA-MNase的一些關鍵特點和應用:1.**融合表達產物**:pA-MNase是蛋白A與微球菌核酸酶MNase的融合表達產物,因此它同時具有ProteinA的抗體結合活性和MNase的核酸內切酶活性。2.**雙重功能**:由于其雙重功能,pA-MNase常用于蛋白質-DNA相互作用研究,特別是在ChIC(ChromatinImmunocleavage)和CUT&RUN(CleavageUnderTargetsandReleaseUsingNuclease)技術中。3.**ProteinA的特性**:ProteinA是一種發現于金黃色葡萄球菌(Staphylococcusaureus)的細胞壁表面蛋白,分子量為42kDa,能特異性地與哺乳動物免疫球蛋白(Immunoglobulin,Ig)結合,通常結合部位為免疫球蛋白的Fc區。4.**微球菌核酸酶(MNase)的特性**:MNase是一種核酸內切酶,能夠降解核酸,常用于降解蛋白質制備中存在的核酸,減少細胞裂解液的粘度,以及用于染色質結構分析和快速RNA測序。5.**反應條件**:MNase的反應條件包括1XMicrococcalNucleaseReactionBuffer,需要補充100μg/ml重組白蛋白,分子生物學級,并在37°C下孵化。
5'-3'外切核酸酶活性是指DNA聚合酶能夠從DNA鏈的5'端向3'端切除核苷酸的能力。這種活性通常用于修復受損的DNA或去除錯誤配對的核苷酸。具體來說,5'-3'外切核酸酶活性可以在DNA合成過程中切除前方的核苷酸,幫助錯誤或不需要的序列,從而確保DNA的正確復制和修復。在DNA聚合酶中,5'-3'外切核酸酶活性與聚合酶活性相輔相成。聚合酶在合成新鏈時,5'-3'外切酶活性可以在發現錯誤時進行修正,確保合成的DNA鏈的準確性。例如,E.coliDNA聚合酶I具有這種外切酶活性,可以在合成過程中去除錯誤的核苷酸,從而提高DNA的保真度。需要注意的是,BstDNAPolymerase,LargeFragment不具有5'-3'外切核酸酶活性,這使得它在某些應用中更為穩定,特別是在等溫擴增反應中,如LAMP(環介導等溫擴增)和RCA(滾環擴增)等。Pfu DNA Polymerase 具有較高的保真度,能夠在DNA合成過程中減少錯誤摻入的堿基,降低非目標突變的發生率。
提取的DNA質量評估通常涉及以下幾個方面:1.**純度評估**:-**分光光度法**:通過測量DNA樣本在260nm和280nm處的吸光度(OD值)來評估DNA的純度。純度可以通過OD260/OD280的比值來評估,對于純DNA,這個比值通常在1.8左右。如果比值低于1.8,可能表明存在蛋白質污染;如果高于1.9,則可能存在RNA污染。此外,OD260/OD230的比值可以用來評估鹽離子等雜質的殘留,純DNA的比值應在2.0-2.2之間。-**瓊脂糖凝膠電泳法**:通過電泳分離DNA片段,根據DNA在凝膠上的遷移情況來評估其純度。如果泳道口中存在較亮的條帶,可能表明存在蛋白污染。2.**濃度評估**:-**紫外分光光度計**:使用紫外分光光度計測定DNA在260nm處的吸光度,根據比爾-朗伯定律(Beer-Lambertlaw)計算DNA的濃度。對于純DNA,OD260的讀數為1.0時,大約相當于50μg/mL的雙鏈DNA。-**熒光定量法**:使用熒光染料結合DNA,通過測量熒光變化來定量DNA。這種方法比紫外分光光度法更敏感、精確,并且可能對特定的核酸有特異性。
Tn5 轉座酶可用于多種生物體,包括許多革蘭氏陰性菌、革蘭氏陽性菌以及酵母等。Recombinant Human EphB3 Protein,His Tag
BstDNAPolymerase,LargeFragment(嗜熱脂肪芽孢桿菌DNA聚合酶大片段)是一種經過改造的酶,它來源于嗜熱脂肪芽孢桿菌(Bacillusstearothermophilus)DNA聚合酶I,通過重組技術在大腸桿菌中表達并純化獲得。這種酶具有5'→3'的DNA聚合酶活性,但不具有5'→3'的核酸外切酶活性,因此它在等溫擴增反應中非常有用,如環介導的等溫擴增(LAMP)和滾環擴增(RCA)等。以下是BstDNAPolymerase,LargeFragment的一些關鍵特點和應用:1.**等溫擴增**:BstDNAPolymerase,LargeFragment具有很強的鏈置換能力,適用于多種等溫擴增反應,這些反應通常在50-68°C之間進行,比較好反應溫度為65°C。2.**快速測序**:由于其高聚合酶活性,BstDNAPolymerase,LargeFragment可以用于快速測序,特別是對于高GC含量的DNA模板或微量(納克量級)DNA模板的測序。3.**全基因組擴增**:BstDNAPolymerase,LargeFragment也可用于全基因組擴增(WGA),這是一種在不需要熱循環儀的情況下擴增整個基因組DNA的技術。4.**高dUTP耐受性**:與BstDNAPolymerase2.0相比,BstDNAPolymerase,LargeFragment在進行等溫擴增時不具有將dUTP摻入合成的DNA鏈的能力,這使得它在某些應用中更具優勢。Recombinant Human EphB3 Protein,His Tag
Probe qPCR Mix (2×, UDG Plus):高效防污染的探針法qPCR解決方案Probe qPCR Mix (2×, UDG Plus) 是一種為探針法實時熒光定量PCR(qPCR)設計的即用型預混液,結合了熱啟動Taq DNA聚合酶、優化的反應緩沖液、dUTP和UDG酶,能夠有效防止PCR產物污染,提高檢測的特異性和準確性。產品特點高特異性和靈敏度:采用抗體修飾的熱啟動Taq DNA聚合酶,結合優化的反應緩沖液,有效減少非特異性擴增,提高檢測靈敏度。防污染設計:預混液中包含UDG酶和dUTP,可在反應前降解含尿嘧啶的PCR產物,防止氣溶膠污染。多重檢測能力:支持多重qPCR反...