外泌體（exosomes）是活細胞經過"內吞-融合-外排"等一系列調控過程而形成的膜性囊泡，來源于晚期核內體(也稱為多囊泡體)，直徑約為30-150nm，密度在1.13-1.21g/ml，天然存在于血液、唾液、尿液及母乳等體液中，同時外泌體也存在于組織和細胞間隙中。人體中幾乎所有類型的細胞均能產生外泌體，人體中大約有1014個外泌體，大約平均每個細胞產生1000-10000個。外泌體中含有核酸（DNA、miRNA、lncRNA、mRNA、tRF等）、蛋白和脂類，在細胞間物質和信息轉導中發揮重要作用，研究表明其在干細胞、免疫調控、瘤轉移、血管生成以及生物標志物等領域都發揮著不可替代的作用。將人尿液來源細胞的培養基通過0.22微米濾膜過濾，以去除大的細胞殘片以及其它雜質。南昌外泌體提取試劑進貨價

人體內多種細胞及體液均可分泌外泌體，包括內皮細胞、免疫細胞、血小板、平滑肌細胞等。當其由宿主細胞被分泌到受體細胞中時，外泌體可通過其攜帶的蛋白質、核酸、脂類等來調節受體細胞的生物學活性。外泌體介導的細胞間通訊主要通過以下三種方式：一是外泌體膜蛋白可以與靶細胞膜蛋白結合，進而靶細胞細胞內的信號通路。二是在細胞外基質中，外泌體膜蛋白可以被蛋白酶剪切，剪切的碎片可以作為配體與細胞膜上的受體結合，從而細胞內的信號通路。有報道稱一些外泌體膜上蛋白在其來源細胞膜上未能檢測出。杭州外泌體提取試劑哪家便宜利用不同截留相對分子質量(MWCO)的超濾膜對樣品進行選擇性分離，便可獲得外泌體。

外泌體的提取方法學規范、統一定量及鑒定等。關于外泌體的提取有超速離心、試劑盒、超濾法、蔗糖密度梯度離心等，然而各種方法均有其利弊。超速離心法是目前外泌體相關文章中的主流方法，由于離心步驟繁瑣，費事費力，而且步驟多導致實驗中容易污染，且損耗量大，使得較終回收的外泌體不穩定。而且對于抽提細胞上清來說，更是極為不請便，試想用提取300ml的上清需要6個50ml離心管，無論是過濾還是后續的每一步的離心去沉淀，都具有操作極其不便的缺點，總之非常麻煩。而超濾法存在外泌體會堵塞膜孔，造成濃縮效率低，濃縮管重復利用差，甚至堵塞在膜孔的外泌體還可能會粘連成團，造成損失及較后的數據有誤差，對于后續實驗也有影響。

外泌體（Exosome）是細胞主動分泌的囊泡樣小體，大小均一，直徑30-200nm，密度1.10-1.18g/ml，來源普遍，幾乎所有細胞都可分泌，在血液，尿液，唾液，腦脊液，腹水，乳汁等體液中普遍分布。外泌體較早在1986年發現于培養的綿羊紅細胞上清液中。1996年，研究者發現外泌體作為抗原呈遞因子參與T細胞依賴的抗一些病癥反應，開啟了外泌體蛋白研究的新天地。2013年諾貝爾生物/醫學獎解答了細胞如何組織其內部較重要的運輸系統之一——囊泡傳輸系統的奧秘。超離法因操作簡單，獲得的囊泡數量較多而廣受?歡迎，但過程比較費時，且回收率不穩定，純度也受到質疑。早先應用于從血清等樣本中收集細菌，現在也被用來沉淀外泌體，其原理可能與競爭性結合游離水分子有關。

外泌體的提取方法：1、磁珠免疫法。外泌體表面有其特異性標記物（如CD63、CD9蛋白），用包被抗標記物抗體的磁珠與外泌體囊泡孵育后結合，即可將外泌體吸附并分離出來。磁珠法具有特異性高、操作簡便、不影響外泌體形態完整等優點，但是效率低，外泌體生物活性易受pH和鹽濃度影響，不利于下游實驗，難以普遍普及。2、多聚物沉淀法。聚乙二醇（PEG）為常用的多聚物，可與疏水性蛋白和脂質分子結合共沉淀，早先應用于從血清等樣本中收集病毒，現在也被用來沉淀外泌體，其原理可能與競爭性結合游離水分子有關。利用PEG沉淀外泌體存在不少問題：比如純度和回收率低，雜蛋白較多（假陽性），顆粒大小不均一，產生難以去除的聚合物，機械力或者吐溫-20等化學添加物將會破壞外泌體等。色譜法。這種方法分離到的外泌體在電鏡下大小均一，但是需要特殊的設備，應用不普遍。正規外泌體提取試劑服務電話

外泌體提取：磁珠法具有特異性高、操作簡便、不影響外泌體形態完整等優點。南昌外泌體提取試劑進貨價

當其由宿主細胞被分泌到受體細胞中時，外泌體可通過其攜帶的蛋白質、核酸、脂類等來調節受體細胞的生物學活性。外泌體介導的細胞間通訊主要通過以下三種方式：一是外泌體膜蛋白可以與靶細胞膜蛋白結合，進而啟動靶細胞細胞內的信號通路。二是在細胞外基質中，外泌體膜蛋白可以被蛋白酶剪切，剪切的碎片可以作為配體與細胞膜上的受體結合，從而啟動細胞內的信號通路。有報道稱一些外泌體膜上蛋白在其來源細胞膜上未能檢測出。三是外泌體膜可以與靶細胞膜直接融合，非選擇性的釋放其所含的蛋白質、mRNA以及microRNA。人體內多種細胞及體液均可分泌外泌體，包括內皮細胞、免疫細胞、血小板、平滑肌細胞等。南昌外泌體提取試劑進貨價