Exosome，中文名外泌體，是一種能被大多數細胞分泌的微小膜泡，具有脂質雙層膜結構，直徑大約40-100nm。盡管外泌體較初在1983年就被發現，但人們一直認為它只是一種細胞的廢棄物。然而較近幾年，人們發現這種微小膜泡中含有細胞特異的蛋白、脂質和核酸，能作為信號分子傳遞給其他細胞從而改變其他細胞的功能。這些發現點燃了人們對細胞分泌膜泡的興趣。較近的研究發現外泌體在很多生理病理上起著重要的作用，如免疫中抗原呈遞、一些病癥的生長與遷移、組織損傷的修復等。不同細胞分泌的外泌體具有不用的組成成分和功能，可作為疾病診斷的生物標志物。外泌體具有脂質雙層膜結構，能很好的保護其包被的物質，且能靶向特定細胞或組織，因此是一種很好靶向給藥系統（targeteddeliverysystem）。獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣，耗時。太原外泌體提取試劑產品介紹

外泌體：該研究主要是做了牡蠣基因組測序，并揭示其應激適應和殼結構的復雜性。其中涉及，所鑒定的259種殼蛋白中的84％不是經典分泌蛋白；它們可能是細胞的一部分或被外泌體沉積而來。259個殼蛋白中的61個與外泌體數據庫中的蛋白質匹配，支持了外泌體的存在。在礦化前緣處觀察到含有方解石晶體的細胞和外泌體樣囊泡，盡管它們在殼形成中的重要性是有爭議的。這項研究為它們在殼內的存在及其可能參與殼形成提供了分子證據。Hedgehog（Hh）蛋白的保守家族作為短距離和長距離分泌的形態發生素，在胚胎發育過程中控制組織構型和分化。成熟的Hh攜帶疏水性棕櫚酸和對其細胞外擴散至關重要的膽固醇修飾。徐州外泌體提取試劑廠家供應外泌體提取：超離法因操作簡單，獲得的囊泡數量較多而廣受歡迎。

1983年，外泌體初次于綿羊網織紅細胞中被發現，1987年Johnstone將其命名為“exosome”。多種細胞在正常及病理狀態下均可分泌外泌體。其主要來源于細胞內溶酶體微粒內陷形成的多囊泡體，經多囊泡體外膜與細胞膜融合后釋放到胞外基質中。所有培養的細胞類型均可分泌外泌體，且外泌體天然存在于體液中，包括血液、唾液、尿液、腦脊液和乳汁中。有關他們分泌和攝取及其組成、“運載物”和相應功能的精確分子機制剛剛開始研究。外泌體目前被視為特異性分泌的膜泡，參與細胞間通訊，對外泌體的研究興趣日益增長，無論是研究其功能還是了解如何將其用于微創診斷的開發。如何高效地提取外泌體是實現這項新興液體活檢技術臨床常規化應用的關鍵

外泌體的提取方法：1、磁珠免疫法。外泌體表面有其特異性標記物（如CD63、CD9蛋白），用包被抗標記物抗體的磁珠與外泌體囊泡孵育后結合，即可將外泌體吸附并分離出來。磁珠法具有特異性高、操作簡便、不影響外泌體形態完整等優點，但是效率低，外泌體生物活性易受pH和鹽濃度影響，不利于下游實驗，難以普遍普及。2、多聚物沉淀法。聚乙二醇（PEG）為常用的多聚物，可與疏水性蛋白和脂質分子結合共沉淀，早先應用于從血清等樣本中收集病毒，現在也被用來沉淀外泌體，其原理可能與競爭性結合游離水分子有關。利用PEG沉淀外泌體存在不少問題：比如純度和回收率低，雜蛋白較多（假陽性），顆粒大小不均一，產生難以去除的聚合物，機械力或者吐溫-20等化學添加物將會破壞外泌體等用于外泌體提取的體液收集注意事項：操作要輕柔迅速。

外泌體的提取、分離方法：超高速離心法。常用的是超高速離心法，該方法是被譽為分離外泌體的“金標準”。該方法利用離心力從細胞培養液或生物流體獲得外泌體，經過400×g、2000×g、10000×g的低速離心，除去細胞及大的細胞分泌物；較后超高速100000×g離心得到外泌體[12]。超高速離心因操作簡單，不需要復雜的技術支持，并且成本相對較低而被普遍使用。但是該方法耗時、產率低，得到的外泌體的數量和質量很大程度上受轉子的類型、轉子沉降角度等因素影響，其中較主要的問題就是差速離心法獲得的沉淀物是外泌體，但也會有其他的囊泡、蛋白質或蛋白和RNA的聚集體。外泌體提純試劑盒的特色與優勢：樣本輸入量多樣。無錫正規外泌體提取試劑服務電話

外泌體的提取、分離方法：梯度密度離心法。太原外泌體提取試劑產品介紹

外泌體的提取方法：1、色譜法。色譜法是利用根據凝膠孔隙的孔徑大小與樣品分子尺寸的相對關系而對溶質進行分離的分析的方法。樣品中大分子不能進入凝膠孔，只能沿多孔凝膠粒子之間的空隙通過色譜柱，首先被流動相洗脫出來；小分子可進入凝膠中絕大部分孔洞，在柱中受到更強地滯留，更慢地被洗脫出。分離到的外泌體在電鏡下大小均一，但是需要特殊的設備，應用不普遍。2、超濾離心。由于外泌體是一個大小約幾十納米的囊狀小體，大于一般蛋白質，利用不同截留相對分子質量(MWCO)的超濾膜對樣品進行選擇性分離，便可獲得外泌體。超濾離心法簡單高效，且不影響外泌體的生物活性，是提取細胞外泌體的一種新方法。太原外泌體提取試劑產品介紹

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