原代細胞培養實驗室常規步驟為：1）將動物組織從機體中取出并消毒除去存留在組織上的細菌、細菌、等污染源，這些污染源將會所需培養的原代細胞凋亡、停止生長和繁殖直至死亡，因此整個原代細胞培養過程中較全在無菌狀態下進行。2）將組織塊在選定的蛋白酶溶液中浸泡20-30分鐘，通常在37C水浴里進行，而蛋白酶的選定取決于部位組織和所需細胞的類型，比如成骨、肌肉、心、肝等就需要用胰蛋白酶才能解而出單個細胞，但是對于腦組織和乳腺等軟組織，就只能用分解能力較弱的膠原蛋白酶，以免損傷分散出來的單個細胞。3）將分散而成的單個細胞置于合適的培養基（含有特殊細胞生長因子、添加劑以及血清，或者無血清培養基）中培養，使細胞得以生存、生長和繁殖，整個過程都是在無菌情況下操作。適當增大原代培養接種的細胞密度。蘇州原代細胞分離試劑盒廠家直銷

膠原酶的配制：建議看相關的文獻進行膠原酶的配制。小編常用的是DMEM進行配制，配制好的膠原酶消化液放置在37℃水浴鍋內預熱（注意現用現配）。胰酶（酶聯合法獲取原代細胞中會加入胰酶，相關文章也蠻多的）膠原酶消化時間：根據組織特性，消化時間會有差異。以小鼠腎細胞為例，加入膠原酶Ⅰ進行消化后，放入37℃培養箱中消化45min~1h左右，期間每10min中震蕩一次，知道組織塊幾乎完全消失為止（若是組織塊剪得非常細小，時間可以短一些，30min左右即可）。原代細胞的獲取：酶消化法：所用試劑：膠原酶和胰酶無錫北京原代細胞分離試劑盒當細胞向外遷徙出來后要注意記錄并去除漂浮的組織塊和殘留的細胞。

懸浮型原代細胞：1）必須保持細胞的懸浮狀態?？梢酝ㄟ^增加培養液的黏度來幫助細胞呈懸浮狀態，如給培養液中加入低濃度的透明質酸復合物。在有攪拌裝置的培養器皿內加入培養液是，以5ml為較低限度，否則攪拌時會產生氣泡對細胞造成傷害。使用這種方式需注意勿使攪拌速度過快，否則即可使培養液溢出又容易造成污染。如果培養液的量在5ml以下，可以采用旋轉瓶培養。給懸浮培養的細胞換液時要注意不要吸出細胞2）能夠進行懸浮培養的細胞，其生命力一般都比較旺盛，體外分裂增殖的速度較快，營養成分消耗大，換液時間隔一般較短。

原代細胞的獲?。?.培養時間無論是酶消化法還是組織塊法，取樣后培養時間較少需要一周以上的時間，期間可換液或者傳代。2.換液時間無論酶消化法還是組織塊法，在培養期間需要隨時關注細胞的生長狀況，需觀察其是否貼壁，是否污染，組織塊法要觀察是否有細胞遷移出來。正常情況下48~72h可換液一次。3.細胞狀態判斷正常貼壁細胞在培養幾天后，會逐漸貼滿整個瓶底或者皿底，有的呈纖維狀，有的呈多邊形。下圖均為比較健康的原代細胞圖（左：小鼠成纖維細胞；右：雞胚成纖維細胞；下：人成纖維細胞）原代細胞的培養是指直接從機體取下細胞、組織和部位后立即進行培養。

原代細胞的培養與建系細胞的來源多樣，培養方法也各不相同，凡是來源于胚胎、組織部位及外周血，經特殊分離方法制備而來的原初培養的細胞稱之為原代細胞。原代細胞經分散接種之手段稱為傳代。凡能經傳代方式進行再次培養的細胞稱為傳代細胞。若能穩定生長傳至10~20代以上的細胞可確立為細胞系。若有條件能開展單細胞克隆、純化，經大量擴增后所形成的生物學特性穩定的克隆化細胞群，稱之為細胞株或克隆細胞。此過程稱為細胞的純化或細胞克隆。這些基本技術是從事細胞培養工作的基礎，只有熟悉和掌握了基本技術,才可能更快捷地學習和掌握其他方法,本章重點敘述常用的基本技術。靠前節原代細胞的取材人和動物細胞的取材是原代細胞培養成功的首要條件，是進行細胞培養的靠前步，若取材不當，將會直接影響細胞的體外培養使用這種方式需注意勿使攪拌速度過快，否則即可使培養液溢出又容易造成污染。無錫北京原代細胞分離試劑盒

在這些細胞之間能產生一些促生長的活性物質，使細胞彼此互相促進存活和生長。蘇州原代細胞分離試劑盒廠家直銷

原代細胞培養的開始傳代：原代培養后由于懸浮細胞增殖，數量增加甚至達飽和密度;貼壁細胞的相互匯合，使整個瓶底逐漸被細胞覆蓋，細胞難以繼續生長繁殖，需要進行分瓶培養，這種使原代細胞經分散接種的過程稱之為傳代。值得注意的是：每次傳代細胞在生長和增殖方面受到一定的影響。開始傳代應注意以下幾點：①細胞生長密度不高時，不能急于傳代。②原代培養的貼壁細胞需控制消化時間。③吹打已消化的細胞應減少機械損傷。④開始傳代時細胞接種數量要多一些。⑤開始傳代培養的pH應偏低些。小牛血清濃度可加大至15%～20%左右。蘇州原代細胞分離試劑盒廠家直銷