細胞凍存秘籍：1.在倒置相差顯微鏡上每隔幾分鐘檢查酶處理的進展情況。一旦細胞變圓，輕輕敲擊細胞瓶使其脫離塑料表面。加入5mL含血清的生長培養基滅活胰酶。可能需要劇烈的移液操作來使培養容器底部的剩余細胞脫落，或將細胞團塊分解成單細胞懸浮液。胰酶的去除或失活對于冷凍細胞至關重要。如果游離試劑不能直接滅活，可以通過下一步的離心去除。2.用15ml離心管收集細胞。取出樣本進行細胞計數，剩余的細胞懸液以約100×g離心5分鐘以獲得細胞沉淀。離心時，用細胞計數板對細胞進行計數。使用臺盼藍染液檢查細胞的活性。程序降溫法使用的凍存液主要配方為培養基、血清、DMSO。寧波天津無血清細胞凍存液

細胞凍存是將細胞放在低溫環境，減少細胞代謝，以便長期儲存的一種技術。細胞凍存是細胞保存的主要方法之一，起到了細胞保種的作用。細胞凍存是細胞保存的主要方法之一，利用凍存技術可以使細胞暫時脫離生長狀態而將其細胞特性保存起來，這樣在需要的時候再復蘇細胞用于實驗。目前現有技術中，細胞凍存液中的主要成分有10％二甲基亞砜(DMSO)、20％～90％胎牛血清(FBS)、剩余組分為完全培養基。培養基以及FBS可為細胞提供必要的營養物質。DMSO是一種滲透性保護劑，能夠降低細胞冰點，減少冰晶的形成，從而達到降低細胞損傷的保護效果。但FBS屬于動物源性物質，成分比較復雜，在臨床應用上存在潛在的風險，也增加了污染的幾率，并且由于凍存液中含有動物血清，會導致凍存液的成分存在不穩定的因素。廣州無血清細胞凍存液銷售廠家無血清細胞凍存液的優勢：含DMSO、糖類、氨基酸等成分的一款通用型細胞凍存液。

細胞凍存步驟說明：配制含10%DMSO或甘油、10~20%小牛血清的凍存培養液;取對數生長期的細胞，去除舊培養液，用PBS清洗。去除PBS，加入適量胰蛋白酶(覆蓋培養皿表面)把單層生長的細胞消化下來;離心1000rpm，5min;去除胰蛋白酶，加入適量配制好的凍存培養液，用吸管輕輕吹打使細胞均勻，計數，調節存液中細胞的較終密度為5×106/ml~1×107/ml;將細胞分裝入凍存管中，每管1~1.5ml;在凍存管上標明細胞的名稱，凍存時間及操作者;凍存:標準的凍存程序為降溫速率-1~-2℃/min;當溫度達-25℃以下時，可增至-5℃~-10℃/min;到-100℃時，則可迅速浸入液氮中。也可將裝有細胞的凍存管放入-20℃冰箱2h，然后放入-70℃冰箱中過夜，取出凍存管，移入液氮容器內。

冷凍速率：冷凍速率是指降溫的速度，直接關系到冷凍效果。冷凍速度不同，細胞內水分向外流動的情況也不相同，不同的冷凍速度既然能使細胞內發生不同的生理變化，也可以對細胞產生不同的損傷。超快速玻璃化冷凍對細胞存活來說是較為理想的冷凍方法。細胞內外呈玻璃化凝固，無冰晶形成或形成很小的冰晶，對細胞膜和細胞器不致造成損傷，細胞也不會在高濃度的溶質中長時間暴露而受損。不同細胞的較適冷凍速率不同。小鼠骨髓干細胞、酵母、人紅細胞的較適冷凍速率分別為1.6℃/min、7℃/min和200℃/min。細胞與細胞之間的較適冷凍速率可在1.6℃～300℃/min，故對一種細胞進行冷凍保存之前，首先需要測定其較適冷凍速率，以保證獲得較高的冷凍存活率。在冰袋附近操作時，低溫避免保護劑對細胞造成損傷。

復蘇方：法1）從冰箱里取出細胞冷凍保存管，立即放入37℃振動水浴槽中快速解凍。2）待凍存管中細胞混合液完全融化后，立即加入1ml細胞培養基于該冷凍管中與細胞混合，再將細胞混合液從凍存管中移入含有9ml該細胞培養基的試管中，混合均勻。3）離心收集培養細胞（參考離心條件：1,000~2,000rpm，4℃，3~5min），移去上清液。4）清洗細胞，充分洗凈殘留凍存液。5）加入適量的新鮮細胞培養基，使用移液管緩緩地均勻細胞混合液。適量地稀釋后，將細胞混合液移至事先準備好的培養瓶中。6）鏡檢后，研究者可根據各自方法和需要來進行細胞培養。存細胞時需現配凍存液(如購買市面上通用的含血清細胞凍存液。上海昆明無血清細胞凍存液

無血清細胞凍存液，2-8℃保存即可，無需再進行分裝。寧波天津無血清細胞凍存液

無血清細胞凍存液，細胞凍存與復蘇后，平均活細胞回收比例超過80%。與含血清凍存液比較，BI無血清凍存液細胞存活率都有較佳的表，BI無血清細胞凍存液也適用于動物血清培養的細胞凍存。復蘇細胞：1.將細胞凍存管由液態氮中取出，置于37度水浴快速溶解回溫。此時可準備培養基、無菌15ml離心管、培養瓶。2.于生物安全柜內，直接以少量培養基反復沖融，使細胞團塊化凍。3.先在無菌15ml離心管中加入5ml培養基，再將化凍的細胞懸液加入離心管中。以200~300g，3分鐘離心收集細胞。4.倒去上清液，以新鮮培養基重懸細胞，移到培養瓶中培養。5.隔天更換新鮮培養基，并觀察細胞存活狀況。寧波天津無血清細胞凍存液