原代細(xì)胞傳代培養(yǎng)方法：1.當(dāng)細(xì)胞達(dá)到80-90%融合時(shí)需要傳代培養(yǎng)。2.提前準(zhǔn)備好多聚賴氨酸（PLL，貨號(hào)0403）或纖維粘連蛋白（BPF，貨號(hào)8248）包被好的培養(yǎng)瓶。3.將完全培養(yǎng)基，胰酶/EDTA消化液（T/E，貨號(hào)0103），胰胰中和液（TNS，貨號(hào)0113）和不含鈣鎂離子的DPBS（貨號(hào)0303）加熱至室溫。我們不推薦用37度水浴加熱試劑和培養(yǎng)基。4.用DPBS沖洗細(xì)胞。5.以T-75培養(yǎng)瓶為例，向培養(yǎng)瓶中加入8mlDPBS，然后加入2ml胰酶/EDTA消化液。輕輕搖動(dòng)培養(yǎng)瓶保證細(xì)胞被胰酶/EDTA消化液完全覆蓋。將培養(yǎng)瓶置于37度培養(yǎng)箱1-2分鐘直到細(xì)胞變圓。在顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)變化。6.在消化期間，準(zhǔn)備一支50ml離心管加入5ml胎牛血清（FBS，貨號(hào)0500）。接種的細(xì)胞密度過(guò)大，會(huì)導(dǎo)致?tīng)I(yíng)養(yǎng)物質(zhì)供應(yīng)不足。上海貴陽(yáng)原代細(xì)胞分離試劑盒

原代細(xì)胞培養(yǎng)注意事項(xiàng)：1.收到細(xì)胞時(shí)，要鏡下觀察是否有污染情況；收到細(xì)胞的前幾天，要做好各種倍數(shù)的鏡下拍照記錄，以防細(xì)胞出現(xiàn)問(wèn)題后，可以跟公司很好地溝通。2.收到細(xì)胞后，不要馬上處理。應(yīng)置于培養(yǎng)箱中靜置4h以上再操作。如果不著急，可靜置過(guò)夜。3.細(xì)胞的靠前次傳代，一定要密度高一些傳代，原代細(xì)胞傳代密度低，很難長(zhǎng)起來(lái)。建議1:2-1:3傳代。4.原代細(xì)胞傳代時(shí)（內(nèi)皮細(xì)胞，貼壁為例），0.25%+0.53nM的胰酶消化，1ml消化液37度培養(yǎng)箱內(nèi)消化30sec，再加入5ml培養(yǎng)基（正常消化貼壁細(xì)胞，我們使用胰酶和培養(yǎng)基的量是1:1，但是原代細(xì)胞必須用大量培養(yǎng)基中和胰酶）。5.原代細(xì)胞不建議凍存，因?yàn)閮龃婧苋菀讖?fù)活不成功。如果要凍存的話，建議在P2或P3代凍存，凍存液中的血清越多越好，建議比例9（血清）:1（DMSO）。6.原代細(xì)胞復(fù)蘇時(shí)，置于37-38度水浴融化細(xì)胞，并加入10ml培養(yǎng)液（正常貼壁細(xì)胞復(fù)蘇時(shí)，也可以使用這種比例，復(fù)蘇成活率會(huì)較大提高），離心重懸鋪板。上海貴陽(yáng)原代細(xì)胞分離試劑盒原代細(xì)胞不僅普遍應(yīng)用于分子、細(xì)胞生物學(xué)和生物醫(yī)學(xué)基礎(chǔ)研究。

原代細(xì)胞培養(yǎng)的開(kāi)始傳代：原代培養(yǎng)后由于懸浮細(xì)胞增殖，數(shù)量增加甚至達(dá)飽和密度;貼壁細(xì)胞的相互匯合，使整個(gè)瓶底逐漸被細(xì)胞覆蓋，細(xì)胞難以繼續(xù)生長(zhǎng)繁殖，需要進(jìn)行分瓶培養(yǎng)，這種使原代細(xì)胞經(jīng)分散接種的過(guò)程稱之為傳代。值得注意的是：每次傳代細(xì)胞在生長(zhǎng)和增殖方面受到一定的影響。開(kāi)始傳代應(yīng)注意以下幾點(diǎn)：①細(xì)胞生長(zhǎng)密度不高時(shí)，不能急于傳代。②原代培養(yǎng)的貼壁細(xì)胞需控制消化時(shí)間。③吹打已消化的細(xì)胞應(yīng)減少機(jī)械損傷。④開(kāi)始傳代時(shí)細(xì)胞接種數(shù)量要多一些。⑤開(kāi)始傳代培養(yǎng)的pH應(yīng)偏低些。小牛血清濃度可加大至15%～20%左右。

原代細(xì)胞的培養(yǎng)與建系細(xì)胞的來(lái)源多樣，培養(yǎng)方法也各不相同，凡是來(lái)源于胚胎、組織部位及外周血，經(jīng)特殊分離方法制備而來(lái)的原初培養(yǎng)的細(xì)胞稱之為原代細(xì)胞。原代細(xì)胞經(jīng)分散接種之手段稱為傳代。凡能經(jīng)傳代方式進(jìn)行再次培養(yǎng)的細(xì)胞稱為傳代細(xì)胞。若能穩(wěn)定生長(zhǎng)傳至10~20代以上的細(xì)胞可確立為細(xì)胞系。若有條件能開(kāi)展單細(xì)胞克隆、純化，經(jīng)大量擴(kuò)增后所形成的生物學(xué)特性穩(wěn)定的克隆化細(xì)胞群，稱之為細(xì)胞株或克隆細(xì)胞。此過(guò)程稱為細(xì)胞的純化或細(xì)胞克隆。這些基本技術(shù)是從事細(xì)胞培養(yǎng)工作的基礎(chǔ)，只有熟悉和掌握了基本技術(shù),才可能更快捷地學(xué)習(xí)和掌握其他方法,本章重點(diǎn)敘述常用的基本技術(shù)。靠前節(jié)原代細(xì)胞的取材人和動(dòng)物細(xì)胞的取材是原代細(xì)胞培養(yǎng)成功的首要條件，是進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)的靠前步，若取材不當(dāng)，將會(huì)直接影響細(xì)胞的體外培養(yǎng)細(xì)胞培養(yǎng)過(guò)程中，多久更換一次培養(yǎng)基這取決于細(xì)胞生長(zhǎng)的速度。

原代細(xì)胞的小知識(shí)：1.解凍原代細(xì)胞對(duì)解凍過(guò)程非常敏感，因此將小瓶置于37℃水浴鍋中，保持并輕輕旋轉(zhuǎn)直到內(nèi)容物剛剛解凍是很重要的。然后應(yīng)立即從水浴中取出小瓶，并轉(zhuǎn)移到無(wú)菌操作臺(tái)。確保您的培養(yǎng)瓶在解凍前已經(jīng)準(zhǔn)備就緒，以便可以立即用于接種細(xì)胞，并置于培養(yǎng)箱中，我們?cè)谑褂胏ellsystems的原代視網(wǎng)膜內(nèi)皮細(xì)胞時(shí)，復(fù)蘇的時(shí)候沒(méi)有去離心，第二天換個(gè)液就可以。2.傳代原代細(xì)胞有間隙克制接觸不良反應(yīng)，所以細(xì)胞不能到達(dá)100%的密度的時(shí)候傳代，一般較有效的建議觀察細(xì)胞的生長(zhǎng)周期，CellSystems的原代細(xì)胞在細(xì)胞密度達(dá)到85%左右的時(shí)候傳代較佳，當(dāng)生長(zhǎng)至100％匯合時(shí)，它就會(huì)衰老。記住，所有的原代細(xì)胞不是100％純，因此我們要盡量減少污染細(xì)胞的生長(zhǎng)。當(dāng)細(xì)胞傳代時(shí)，使用低濃度的胰蛋白酶，也可以嘗試下cellsystems的整體消化套裝哦（品牌：cellsystems，貨號(hào)：4Z0-800）并在顯微鏡下密切監(jiān)測(cè)細(xì)胞。此外，記得在胰蛋白酶消化后完全中和細(xì)胞中的胰酶，因?yàn)槿魏位钚缘囊鹊鞍酌付紝p傷細(xì)胞應(yīng)該添加額外的組織特異性因子，以防止成纖維細(xì)胞的生長(zhǎng)。上海貴陽(yáng)原代細(xì)胞分離試劑盒

只用于某些特定的細(xì)菌如豬傳染性腸胃炎細(xì)菌的培養(yǎng)。上海貴陽(yáng)原代細(xì)胞分離試劑盒

原代細(xì)胞的獲取：酶消化法：所用試劑：膠原酶和胰酶。膠原酶的配制：建議看相關(guān)的文獻(xiàn)進(jìn)行膠原酶的配制。小編常用的是DMEM進(jìn)行配制，配制好的膠原酶消化液放置在37℃水浴鍋內(nèi)預(yù)熱（注意現(xiàn)用現(xiàn)配）。胰酶（酶聯(lián)合法獲取原代細(xì)胞中會(huì)加入胰酶，相關(guān)文章也蠻多的）膠原酶消化時(shí)間：根據(jù)組織特性，消化時(shí)間會(huì)有差異。以小鼠腎細(xì)胞為例，加入膠原酶Ⅰ進(jìn)行消化后，放入37℃培養(yǎng)箱中消化45min~1h左右，期間每10min中震蕩一次，知道組織塊幾乎完全消失為止（若是組織塊剪得非常細(xì)小，時(shí)間可以短一些，30min左右即可）。上海貴陽(yáng)原代細(xì)胞分離試劑盒