細胞凍存經驗談:選對凍存培養基才是王道：研究人員經常需要冷凍細胞并保存，以供后續實驗或臨床使用。基本過程相當簡單：慢慢冷凍細胞，將凍存管放入液氮中，并在需要時快速解凍。凍存培養基能支持細胞并防止冰晶形成。不過，Malfavon的體驗告訴我們，使用不同的凍存培養基，結果那可是大不同。一些經驗老道的研究人員自己制備凍存培養基。不過，那些面對脆弱細胞（比如原代和多能細胞）的研究人員，則更喜歡購買標準化的商業產品。一些非常敏感的細胞系也許能從添加物中受益，以避免細胞在解凍時凋亡。無需程序降溫，細胞復蘇率90%以上。南昌正規無血清細胞凍存液廠家現貨

細胞凍存步驟說明：配制含10%DMSO或甘油、10~20%小牛血清的凍存培養液;取對數生長期的細胞，去除舊培養液，用PBS清洗。去除PBS，加入適量胰蛋白酶(覆蓋培養皿表面)把單層生長的細胞消化下來;離心1000rpm，5min;去除胰蛋白酶，加入適量配制好的凍存培養液，用吸管輕輕吹打使細胞均勻，計數，調節存液中細胞的較終密度為5×106/ml~1×107/ml;將細胞分裝入凍存管中，每管1~1.5ml;在凍存管上標明細胞的名稱，凍存時間及操作者;凍存:標準的凍存程序為降溫速率-1~-2℃/min;當溫度達-25℃以下時，可增至-5℃~-10℃/min;到-100℃時，則可迅速浸入液氮中。也可將裝有細胞的凍存管放入-20℃冰箱2h，然后放入-70℃冰箱中過夜，取出凍存管，移入液氮容器內。無錫無血清細胞凍存液廠家現貨無血清凍存液用途：科研高校，無血清細胞凍存液用于細胞株凍存。

細胞凍存及復蘇的基本原則是“慢凍快融”，這樣可以較大限度的保存細胞活力。目前細胞凍存多用二甲基亞砜（DMSO）作為保護劑，這兩種物質能提高細胞膜對水的通透性；緩慢冷凍可使細胞內的水分滲出細胞外，減少細胞內冰晶的形成，從而減少冰晶對細胞的物理損傷。復蘇細胞采用快速融化的方法可以保證細胞外結晶在很短的時間內融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細胞內形成胞內再結晶對細胞造成損傷。血清完全細胞凍存液，通用于各種動物細胞株。特別配方有效提高細胞存活率和活力。不含動物來源性蛋白，能減少各類病毒、霉菌和支原體等污染，確保凍存細胞安全。適合用于無血清培養細胞和蛋白表達細胞。

細胞凍存：就凍存細胞而言，為了防止細胞在溫度下降時產生胞內細微冰晶，其溫度的下降不能太快。標準的操作是每一分鐘下降一度。有以下三種建議：（1）優先推薦使用程控降溫儀。（2）其次，加有異丙醇的細胞凍存盒，基本上也可以保證每分鐘1℃左右的降溫速度；（3）還有一些普遍的簡易凍存方法。如4℃半小時，-20℃半小時，然后-80℃過夜，再放入液氮；用泡沫盒（裝15mL離心管的那種）加一個保鮮袋，直接放在-80℃凍存；也可以用紗布做成袋子，將細胞懸掛在液氮上方，隔天轉入液氮；在凍存管外面包上棉花，直接放在-80℃冰箱就能夠達到緩慢降溫的效果；有的時候如果確實比較緊急的話，向96孔凍存盒的內部加滿自來水，再將凍存管放置孔中，直接置于-80℃，這樣也能夠達到緩慢降溫的目的。無血清凍存液用途：細胞保藏中心，無血清細胞凍存液用于細胞株的長期保存。

年連續三年成為新賽美全產品線中“受客戶喜歡的科研產品”“無血清細胞凍存液關鍵技術及產業化”項目成功入圍“2017年東吳科技創新創業人才計劃“3優勢分析傳統凍存液CELLSAVING成分“血清+培養基+dmso”四大類，成分明確，不含血清安全性1、微生物污染風險2、批次不穩定1、無微生物污染風險險2、批次穩定操作1、4℃(40min)→20℃(30min)→80℃→液氮2、程序性降溫盒（多人共用；異丙醇）直接凍于-80℃冰箱，長期保存效果活率偏低，批次有差異，不適用無血清細胞凍存90%以上，復蘇后幾乎看不到死細胞同時另一些保護劑不能穿透細胞。廈門正規無血清細胞凍存液廠家批發價

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細胞凍存注意事項：離心問題：目前主要有兩種見解。一種是解凍后的細胞懸液直接吹打均勻后分裝到培養瓶中進行培養，第二天換液。因為離心的目的是兩個，去除DMSO，去除死細胞，這個是標準流程，但對一般人來說，把握不好離心轉速和時間，轉的不夠活細胞沉底的少，細胞就全被扔掉了，轉過了活細胞會受壓過大，死亡。此外在操作過程中容易污染，所以不推薦。另一種說法為細胞懸液中含有二甲基亞砜（DMSO），DMSO對細胞有一定的毒副作用，所以須將離心后的液體前倒凈，且一定倒干凈。我在試驗中按照常規的離心分裝的方法進行復蘇，結果無有異常。南昌正規無血清細胞凍存液廠家現貨